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電泳分離技術(shù)
電泳是帶電粒子在電場作用下的遷移。
帶正電的粒子向陰極遷移,帶負電的粒子向陽極遷移。
它們的遷移速率取決于電場強度,粒子(即分子)的凈電荷,大小和形狀以及分子在其中移動的介質(zhì)的離子強度,粘度和溫度。
作為一種分析工具,電泳簡單,快速且靈敏度高。
由于許多重要的生物分子(例如核酸和蛋白質(zhì))都具有可電離的基團,因此它們在任何給定的pH值下都帶有電荷。
因此,電泳是生物化學(xué)和分子生物學(xué)中最廣泛使用的技術(shù)之一。
核酸由于其磷酸鹽主鏈而帶負電荷,因此會向陽極遷移。
通過電泳分離核酸在支持基質(zhì)或“凝膠”中進行,最常用的是瓊脂糖或聚丙烯酰胺。
通常,將凝膠澆鑄成薄板狀,并帶有用于裝載樣品的孔。
將凝膠浸入電泳緩沖液中,電泳緩沖液提供離子以承載電流,并提供某種類型的緩沖液以將pH維持在相對恒定的值。
載體基質(zhì)提供了按大小分離分子的方法,因為它們是多孔凝膠。
多孔凝膠可以通過阻止或在某些情況下完全阻止大分子的移動,同時允許較小的分子自由遷移來充當(dāng)篩子。
瓊脂糖是從海藻中提取的多糖。
通常以0.5%至2%的濃度使用。
瓊脂糖濃度越高,凝膠“就越硬”。
瓊脂糖凝膠具有較大的分離范圍,但分離能力較低。
通過改變瓊脂糖的濃度,可以使用標(biāo)準(zhǔn)電泳技術(shù)分離約200至50,000 bp的DNA片段。
聚丙烯酰胺凝膠是丙烯酰胺的交聯(lián)聚合物。
聚合物鏈的長度取決于所用丙烯酰胺的濃度,通常在3.5%至20%之間。
聚丙烯酰胺凝膠的分離范圍很小,但分離能力非常高。
對于DNA,聚丙烯酰胺用于分離小于約500 bp的片段。
但是,在適當(dāng)?shù)臈l件下,
單個堿基對長度不同的DNA片段很容易分辨。
與瓊脂糖相反,聚丙烯酰胺凝膠被廣泛用于分離和表征蛋白質(zhì)混合物。
對于大多數(shù)DNA和RNA樣品,在瓊脂糖凝膠中進行電泳分離。
由于磷酸鹽骨架,由于DNA或RNA的任何給定片段中每單位長度的電荷相同,因此所有樣品在施加電場的情況下都以相同的遷移率移向陽極。
發(fā)生在瓊脂糖基質(zhì)中的分離是因為它可以阻止核酸的移動。
最大的分子穿過凝膠孔的困難最大,而最小的分子移動沒有太大困難。
這樣,凝膠電泳期間核酸的遷移率將取決于大小,最小的分子移動最快。
凝膠電泳后,需要對凝膠中的核酸進行染色和可視化。
最常用的染色劑是熒光染料溴化乙錠。
該分子插入核酸分子,可以在紫外線下觀察。
凝膠顯示對應(yīng)于具有不同分子量的不同核酸分子群體的條帶。
片段大小通常以“核苷酸”,“堿基對”或“ kb”(對于數(shù)千個堿基對)報告,具體取決于單鏈或雙鏈DNA是否已分離。
通常通過與包含已知長度的線性DNA片段的市售DNA階梯進行比較來確定片段大小。
到目前為止,已經(jīng)討論過的通過電泳分離的核酸處于天然狀態(tài)。
在這種情況下的電泳條件稱為非變性。
當(dāng)要確定DNA序列或要確定RNA大小時,使用變性條件。
DNA測序凝膠在變性劑(例如尿素和甲酰胺)的存在下運行,并且由于所分析的DNA分子較短,因此使用丙烯酰胺凝膠代替瓊脂糖。
通過凝膠電泳確定RNA的大小需要用變性劑例如甲醛,乙二醛和甲基汞氫氧化物使RNA變性。
為了鑒定凝膠中特定核苷酸序列的存在,使用了一種稱為Southern印跡(如果正在分析DNA)或Northern印跡(正在分析RNA)的技術(shù)。
在這兩種情況下,來自完整凝膠的DNA或RNA都將轉(zhuǎn)移到一塊硝酸纖維素膜或尼龍膜上。
然后將膜暴露于雜交探針,即具有特定序列的單個DNA片段,要確定其在靶DNA(或RNA)中的存在。
對探針DNA進行標(biāo)記,以便通??梢酝ㄟ^引入放射性或用熒光或發(fā)色染料標(biāo)記分子來對其進行檢測。
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